كلية الطب البشري

المزيد ...

حول كلية الطب البشري

لقد تم تأسيس كلية الطب البشري في سنة 1973م، بمدينة طرابلس لتقوم بدورها المنوط بها والمتمثل في تخريج الكوادر الطبية المؤهلة، وفي سنة 1980م تم تخريج أول دفعة منها.

تعد كلية الطب البشري من أكبر كليات الجامعة وصرحاً من صروح المعرفة، بحيث أسهمت هذه الكلية خلال العقود الأربعة الماضية في إعداد وتخريج أطباء مؤهلين كان لهم الفضل بعد الله تعالى في إنجاح العمل الطبي من خلال المستشفيات المنتشرة في ربوع الوطن الحبيب لتقديم أفضل الخدمات الصحية، تضم كلية الطب البشري حالياً أكثر من 493 عضو هيئة تدريس جُلهم من العناصر الوطنية الذين كانوا من أوائل الدفعات في هذه الكلية والذين ساهموا في تقديم الخدمات الصحية اللازمة في المستشفيات والعيادات والمستوصفات.

قد تم إيفاد العديد من خريجي هذه الكلية لاستكمال دراستهم في الخارج والذين أثبتوا جدارتهم في التحصيل العلمي والسريري بشهادة العديد من الجامعات العالمية، هذا وفي الوقت الذي تسعي فيه الكلية لتفعيل برنامج الدراسات العليا في مختلف التخصصات فإنها تعمل علي تطوير مفردات مناهجها وطرق التدريس المواكبة لمتطلبات الجودة العالمية.

أخبار كلية الطب البشري

2020-11-27 84 0

الخميس 26/11/2020مأُقيم يوم أمسٍ الخميس الاجتماع الختامي لعملية تدقيق الاعتماد المؤسسي لكلية الطب البشري جامعة طرابلس، حيثُ حضر الاجتماع فريق التقييم التابع لمركز ضمان جودة واعتماد المؤسسات التعليمية والتدريبية وعلى رأسه السيد/ مدير إدارة الاعتماد بالمركز ورئيس الفريق أ. د. عبدالمجيد شعبان، في حين حضر من جانب كلية الطب السادة/  عميد الكلية أ. د. فاتن بن رجب، وكيل الشؤون العلمية بالكلية أ. د. خالد قدارة، رئيس قسم الجودة وتقييم الأداء د. ميلاد الغويل، , أ. مراد البقار مدير الشؤون الادارية و المالية بالكلية ولفيف من رؤساء الأقسام العلمية ومدراء الادارات والمكاتب وأعضاء هيئة التدريس والموظفين بالكلية.حيثُ أشاد رئيس وأعضاء فريق التقييم بالمجهودات التي بذلتها كلية الطب للتقديم للاعتماد المؤسسي، والعمل الجماعي المنتظم لتسهيل عمل فريق التقييم قدر الامكان، متمنين من الله ﷻ التوفيق للكلية في الخطوات القادمة.

عرض التفاصيل
2020-11-23 98 0

الإثنين 23 نوفمبر 2020ماستقبلت كلية الطب البشري بجامعة طرابلس اليوم الإثنين وفد مركز ضمان جودة واعتماد المؤسسات التعليمية والتدريبية يضم كُلًّا من السّادة/ مدير المركز أ. د. محمد العتوق، مدير إدارة ضمان الجودة د. سالم الفرد، مدير إدارة الإعتماد ورئيس لجنة تقييم كلية الطب البشري د. عبدالمجيد شعبان، بالإضافة للسادة أعضاء لجنة التقييم؛ في حين كان في استقبال الوفد كُلًّا من السّادة/ رئيس جامعة طرابلس أ. د. نبيل النطاح، وكيل الكليات الطبية أ. د. عبدالرزاق العوزي، عميد كلية الطب أ. د. فاتن بن رجب، وكيل كلية الطب أ. د. خالد قدارة، أ. مراد البقار مدير الشؤون الإدارية والمالية بالكلية و رئيس قسم الجودة بكلية الطب د. ميلاد الغويل. وقد ابتدأت لجنة التقييم أعمالها اليوم لتقييم كلية الطب البشري مُؤسّسيًا وتكون بذلك أخذت أُولى الخطوات في طريق الاعتماد، وأيضًا لتكون أُولى كُليات الطب البشري بالجامعات الليبية التي تقدّمت للاعتماد المؤسسي من مركز ضمان الجودة.

عرض التفاصيل
المزيد من الأخبار

من يعمل بـكلية الطب البشري

يوجد بـكلية الطب البشري أكثر من 98 عضو هيئة تدريس

staff photo

د. محمد عبدالسلام محمد القريو

محمد القريو هو احد اعضاء هيئة التدريس بقسم الأنسجة والوراثة بكلية الطب البشري. يعمل السيد محمد القريو بجامعة طرابلس كـاستاذ مساعد منذ 2016-01-08 وله العديد من المنشورات العلمية في مجال تخصصه

منشورات مختارة

بعض المنشورات التي تم نشرها في كلية الطب البشري

Cerebellar Organotypic Slice Culture System: A Model of Developing Brain Ischaemia

Ischaemic injury during brain development correlates with long-term neurological problems resulting in part from oligodendrocytes (OL) damage and a loss of appropriate myelination. The molecular and cellular mechanisms responsible remain partially understood and there is no effective clinical treatment. Here we develop and characterise an ex-vivo slice culture ischaemia model to elucidate the cellular mechanisms to aid the search for therapeutic interventions. Cerebellar slices from 7 day-old rats were cultured for 10 days and their developmental profile in culture and their response to oxygen-glucose deprivation (OGD) was assessed. During the culture period development of white matter progressed as in-vivo, the numbers of oligodendrocyte precursor cells (OPC) decreased and the numbers of mature OLs increased and there was extensive myelination of axons as judged by colocalisation of myelin basic protein and neurofilament. Cultured slices were exposed to a short period of OGD at 7 days in-vitro and reperfused to mimic in-vivo conditions. Twenty minutes of OGD was found to result in significant injury as judged by a 58.6% reduction in cell viability 3 days post-injury. Treatment of cultures with OGD resulted in a loss of OLs and a loss of myelination of axons. In summary we have developed a paradigm for studying the damage to OLs and loss of myelination associated with ischaemic periods during development which should facilitate the search for understanding the mechanisms responsible and identifying potential therapeutic interventions.
Mohamed A M Al Griw , Mohamed A. Al-Griw, Ian C. Wood, Michael G. Salter(11-2017)
Publisher's website

Mode of Cell Death in Mouse Brain Following Early Exposure to Low-Dose Trichloroethane: Apoptosis or Necrosis

The goal of this study was to investigate, in-vivo, the predominant mechanism of cell death, apoptosis versus necrosis, in the mature mouse brain exposed early to a ubiquitous environmental toxicant trichloroethane (TCE). A subset of male albino mice was injected intraperitoneally twice weekly for three weeks with TCE (100 and 400µg/kg). All animals were followed up for signs of toxicity and mortality. Changes in neural tissues were histpathologically evaluated. Biomarkers of brain cell number were also studied. The results showed that TCE insult triggered significant alterations in the microstructure of the brain tissues compared to controls. Mitotic figures and apoptotic changes such as chromatin condensation and nuclear fragments were also identified. Cell death analysis demonstrates that cell apoptosis with necrosis was evident in the TCE-treated groups. The percent of necrosis was quantified as 20.09 ± 2.57% at 100µg/kg TCE, 30.57 ± 5.18% at 400µg/kg TCE, and 12.67 ± 1.25% in controls. However, the percent of apoptosis was quantified as 29.18 ± 1.51% at 100µg/kg TCE, 20.14 ± 2.12% at 400µg/kg TCE, and 8 ± 1.25% in controls. There was also a significant reduction in the brain DNA content in the TCE-treated groups. Agarose gel electrophoresis is also provided further biochemical evidence of apoptosis by showing internucleosomal DNA fragmentation. These results correlated with neurobehavioral impairment. These findings indicate that TCE induces degeneration and apoptotic cell death in mouse brain, suggesting a crucial role played by apoptosis in TCE neurotoxicity.
Mohamed A. Al-Griw, Abdul Hakim Elnfati, Naser M. Salama, Massaud S. Maamar, Soad A. Treesh, Taher Shaibi(10-2015)
Publisher's website

Effects of storage temperature on the quantity and integrity of genomic DNA extracted from mice tissues: A comparison of recovery methods

Efficient extraction of genomic DNA (gDNA) from biological materials found in harsh environments is the first step for successful forensic DNA profiling. This study aimed to evaluate two methods for DNA recovery from animal tissues (livers, muscles), focusing on the best storage temperature for DNA yield in term of quality, quantity, and integrity for use in several downstream molecular techniques. Six male Swiss albino mice were sacrificed, liver and muscle tissues (n=32) were then harvested and stored for one week in different temperatures, -20C, 4C, 25C and 40C. The conditioned animal tissues were used for DNA extraction by Chelex-100 method or NucleoSpin Blood and Tissue kit. The extracted gDNA was visualized on 1.5% agarose gel electrophoresis to determine the quality of gDNA and analysed spectrophotometrically to determine the DNA concentration and the purity. Both methods, Chelex-100 and NucleoSpin Blood and Tissue kit found to be appropriate for yielding high quantity of gDNA, with the Chelex100 method yielding a greater quantity (P < 0.045) than the kit. At -20C, 4C, and 25C temperatures, the concentration of DNA yield was numerically lower than at 40C. The NucleoSpin Blood and Tissue kit produced a higher (P=0.031) purity product than the Chelex-100 method, particularly for muscle tissues. The Chelex-100 method is cheap, fast, effective, and is a crucial tool for yielding DNA from animal tissues (livers, muscles) exposed to harsh environment with little limitations.
Huda H. Al-Griw, Zena A. Zraba, Salsabiel K. Al-Muntaser, Marwan M. Draid, Aisha M. Zaidi, Refaat M. Tabagh , Mohamed A. Al-Griw(8-2017)
Publisher's website